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來源: 發布時間:2025-04-11

免疫組化結果背景染色較深的原因有哪些?

 (1)抗體濃度過高:一抗濃度過高是常見的原因之一。解決辦法是,每次使用新抗體前應當對其工作濃度進行測試,使每一抗體個體化,找到適合自己實驗室的理想工作濃度,既使是即用型的抗體也應如此,不能只簡單的按說明書進行染色。

(2)抗體孵育時間過長或溫度較高:解決辦法是,嚴格執行操作規程,比較好隨身佩帶報時表或報時鐘,及時提醒,避免因遺忘而造成時間延長。現在流行的二步法(Polymer)敏感性很高,要求一抗孵育的時間不是傳統的1小時,而是30分鐘,因此,要根據染色結果進行調整。 

(3)DAB變質和顯色時間太長:DAB比較好現用現配,如有沉渣應進行過濾后再用。配制好的DAB不應存放時間太長,因為在沒有酶的情況下,過氧化氫也會游離出氧原子與DAB產生反應而降低DAB的效力,未用完的DAB存放在冰箱里幾天后再用這種似乎節約的辦法是不可取的。DAB的顯色比較好在顯微鏡下監控,達到理想的染色程度時立即終止反應。但是當染**太多時或用染色機時,這樣做似乎不現實,但至少應對一些新的或少用的抗體顯色時進行監控,避免顯色時間過長。

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免疫組化的局限性,可能會有假陽性。陽性信號定位不正確即為假陽性,包括著色不勻、背景著色、邊緣效應,另外組織的某些特定成分也能導致假陽性結果。假陽性可能的原因有:(1)一抗濃度及一抗是否失效,抗體有一個合適的濃度范圍且必須在有效期內使用,過期的抗體或者不著色,或者背景著色,形成假陽性;(2)試劑未充分覆蓋組織,組織邊緣的試劑易干濃度較組織中間高致深染;(3)抗體孵育時間過長,由于室溫的影響夏季孵育時間稍短,冬季孵育時間稍長;(4)操作過程中組織變干,造成組織邊緣收縮或損壞形成偽影,產生假陽性;(5)3,3'-二氨基聯苯胺(DAB)顯色時間太長,DAB宜現配現用,配制時間比較好在30min以內;(6)由于胞漿里含有較多的蛋白質,因此間質和胞漿中出現很多非特異性的染色,如內源性酶血紅蛋白、肌紅蛋白等造成的著色,可以通過血清封閉解決;乳腺cancer組織中的脂肪細胞、淋巴細胞也會產生非特異性的染色;(7)非特異性抗體吸附常見于壞死組織中,使壞死組織呈較高的背景染色,在免疫組化中應避免選擇壞死組織較多的蠟塊。安徽小鼠免疫組化可以做什么英瀚斯生物做免疫組化怎么樣?

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免疫組化中免疫膠體金技術,英瀚斯生物小編為您說明介紹。免疫膠體金技術是以膠體金這樣一種特殊的金屬顆粒作為標記物。膠體金是指金的水溶膠,它能迅速而穩定地吸附蛋白,對蛋白的生物學活性則沒有明顯的影響。因此,用膠體金標記一抗、二抗或其他能特異性結合免疫球蛋白的分子(如葡萄球菌A蛋白)等作為探針,就能對組織或細胞內的抗原進行定性、定位,甚至定量研究。由于膠體金有不同大小的顆粒,且膠體金的電子密度高,所以免疫膠體金技術特別適合于免疫電鏡的單標記或多標記定位研究。由于膠體金本身呈淡至深紅色,因此也適合進行光鏡觀察。如應用銀加強的免疫金銀法則更便于光鏡觀察。

免疫組化的實驗步驟

免疫組化的實驗步驟通常包括組織固定、切片、抗原修復、封閉、一抗孵育、二抗孵育、顯色和復染等。首先,組織樣本需要經過固定(如福爾馬林固定)以保持其形態結構。然后,將固定后的組織包埋在石蠟中并切成薄片。抗原修復是為了暴露被固定過程掩蓋的抗原表位,常用的方法有熱修復和酶消化。封閉步驟是為了減少非特異性結合,通常使用血清或BSA。一抗孵育是關鍵步驟,一抗與目標蛋白特異性結合。二抗孵育則是通過二抗與一抗結合,并連接顯色系統。,通過顯色和復染使目標蛋白可視化。 做免疫組化需要多少錢?

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免疫組化中IHC vs ICC的區別。英瀚斯生物為您說明。除了生物學來源,IHC和ICC在樣品處理的程度上也有所不同。ICC需要透化,要么通過固定過程,要么是單獨的透化步驟,這樣抗體才能與細胞內的靶點相結合。而IHC可能不要單獨的透化步驟,這取決于切片的厚度和固定方法。包埋在石蠟中的IHC切片必須進一步處理,才能進行抗體染色。一旦處理好樣品,IHC和ICC的染色操作就幾乎沒什么差異了。當然,就染色而言,根據所使用的抗體來優化還是少不了的。英瀚斯生物實驗外包,多種病理染色熟練掌握,可做免疫組化!陜西組織免疫組化多少錢

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免疫組化的應用領域

免疫組化在生物醫學研究和臨床診斷中有著廣泛的應用。在**學中,免疫組化通常被用于**標志物的檢測,幫助確定**的類型、分級和預后。例如,免疫組化通過檢測ER、PR和HER2的表達,可以指導乳腺*的治療方案。在神經科學中,免疫組化用于研究神經元的分布和功能。在免疫學中,免疫組化可以用于檢測炎癥細胞和免疫細胞在組織中的分布和水平。此外,免疫組化實驗技術還被廣泛應用于發育生物學、病理學和藥物研發等領域。 吉林靠譜免疫組化推薦

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