在酶聯免疫實驗操作中，加樣是必不可少的項步驟，這步驟在整個實驗中都有著很大的影響。那么酶聯免疫加樣步驟問題應如何解決處理呢？

一、加樣問題的可能原因  

1.血清或血漿標本分離不好即進行加樣；

2.手工操作中，加樣板過多造成加樣后放入孵箱等待時間過長(特別是室內溫度較高時)；

3.加完標本再加酶試劑時酶濺出孔外。

二、解決方法

1.標本為血清：將血液先自然存放1-2小時后，再用3000rmp離心15分鐘；標本為血漿：必須使用含抗凝劑的血液標本收集管，**后必須立即顛倒**管混合5-10次，放置段時間后，3000rpm離心15分鐘；若在幾天內檢測，可放在2-8℃冰箱中，若要貯存，則置于-20℃的低溫冰箱內。

2.加樣后及時放入孵箱。

3.加酶試劑后用吸水紙在酶標板表面輕拭吸干。

4.如果采用AT或其他全自動加樣，選擇FAME或其他后處理儀器加酶試劑。

5.標本較多時，請分批操作。

小建議：在整個操作過程中必須保證酶標板不接觸次氯酸，實現ELISA檢測標準自動化，有效提高檢測質量。

競爭法也是一種很常用的方法，一起看看：

競爭法（Competitive ELISA）是用樣本中的游離抗體/抗原與固相的酶標抗體/抗原競爭性結合的分析方法。當游離抗體（或抗原）濃度越高，則能與固定抗原（或抗體）結合的酶標抗體（或抗原）就越少，后續顯色就越淺，即與對照相比，顯色越淺，表示檢測樣本中抗體（或抗原）含量越高。

該法特別適合小分子物質的檢測也可用于檢測比較不純的樣本，且重復性好，但是檢測的靈敏度和專一性較差。競爭法測抗原常用于檢測小分子抗原及半抗原，這類抗原通常缺乏兩個以上的識別位點，不適用于雙抗夾心法進行測定。該方法在商業化ELISA試劑盒中被廣fan運用。 分選試劑盒以GFP作為標記的質粒可替代抗生su的作用，可以幫助識別哪些細胞成功地轉染了質粒。

細胞毒性是由合成化合物、細胞自然產生毒性或免疫調節細胞(如細胞毒性T淋巴細胞,自然殺傷細胞等)引起的細胞殺傷事件。目前主要通過對受損細胞釋放的相關底物(如乳酸脫氫酶-LDH)進行定量,從而判斷細胞膜的受損情況。本期，將為大家講解有關細胞毒性的檢測產品、原理及特點等內容。

細胞增殖及毒性檢測是生物相容性測試的一種，檢測藥物或者新型材料在生物環境中的毒性情況，即通過檢測材料或者藥物對細胞的增殖或者生長的影響，來評價藥物或材料的毒性或者活性，主要用于藥物活性篩選、細胞增殖測定、細胞毒性測定、抗**藥效測定等；常用MTT法或者CCK-8法檢測，另外也可以通過Live/dead雙染法進行細胞成像，更直觀的記錄細胞的存活情況。

報告基因被廣泛應用于篩選轉化的細胞和組織。在過去的10年里，熒光蛋白已經成為活細胞成像研究中不可或缺的一部分。DsRED是可與其他篩選標記進行雙標記，同時又能避免植物葉綠素自發熒光的理想報告基因。本研究利用含有表達DsRED的雙元載體pKGWRR轉化核桃體細胞胚，并對這種紅色熒光蛋白可視報告基因對胚胎和再生植株的影響進行評估。結果表明，DsRED熒光強度在7~10d達到*高，24個存活的體細胞胚中有14個檢測到紅色熒光。這些E0胚每2周可以獲得25個全熒光E1胚和43個全熒光E2胚。DsRED陽性胚的發芽率達80%以上，獲得了45株可以檢測到紅色熒光的轉基因核桃植株。再生轉基因植株的組織中均能檢測到DsRED表達，包括其營養器guan的橫切面。轉化植株中能形成根的百分比(48.3%)與對照(53%)相近。在核桃體細胞胚的轉化體系中，DsRED的報告系統比綠色熒光蛋白(GFP)更穩定可靠，且其具有直觀和非損傷的特點，提供了一種比b-葡萄糖醛酸酶(GUS)更有效的檢測轉化的手段。示蹤試劑盒中所使用的熒光探針具有極低細胞毒性和無生物活性的特點。

      細胞凋亡晚期,染色體DNA雙鏈斷裂或單鏈斷裂而產生大量的粘性3'-OH末端，可在脫氧核糖核苷酸末端轉移酶（TdT）的作用下，將脫氧核糖核苷酸和熒光素、過氧化物酶、堿性磷酸酶或生物素形成的衍生物標記到DNA的3'-末端，從而可進行凋亡細胞的檢測，這類方法稱為脫氧核糖核苷酸末端轉移酶介導的缺口末端標記法（terminal-deoxynucleotidyl transferase mediated nick end labeling,TUNEL）。由于正常的或正在增殖的細胞幾乎沒有DNA的斷裂，因而沒有3'-OH形成，很少能夠被染色。ELISA試劑盒，抗體檢測才是趨勢。藥敏試劑盒

細胞毒性非常低，因此加入WST-8顯色后，可以在不同時間反復用酶標儀讀數從而找到較好測定時間。穩轉株構建

ELISA是一種基于酶的免疫測定方法，由于酶標的放大作用，利用酶標記抗體的免疫檢測，因其高特異性和敏感性而日益受到人們的青睞。細胞因子夾心ELISA是一種敏感的酶免疫分析方法，可以特異性地檢測和定量可溶性細胞因子和趨化因子蛋白的濃度。這一方法的基本原理是：①將已知抗體結合到某種固相載體表面；②加待測抗原，如兩者是特異的，則發生結合，然后把多余抗體洗除；③加入與待測抗原呈特異反應的酶聯抗體，使形成“夾心”；④加入該酶的底物，若看到有色的酶解產物產生，說明在孔壁上存在相應的抗原，利用酶標儀測其OD值。有色產物的量與待測抗原的量直接相關，故可根據顏色反應的深淺進行定性或定量分析。穩轉株構建

上海中喬新舟生物科技有限公司

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