外泌體分離方法之基于聚合物的沉淀法：基于聚合物的沉淀技術通常包括將生物流體與含聚合物的沉淀溶液混合、4℃孵育和低速離心。用于基于聚合物的沉淀的較常見聚合物之一是聚乙二醇(PEG)。這種聚合物的沉淀可以對分離的外泌體產生溫和影響而且可以產生中性的pH值。由此，出現了幾種常見的外泌體試劑盒：比如：SystemBiosciences,MountainView,CA,ExoQuick等。研究表明，使用ExoQuick方法可以快速執行，無需額外設備，只需用高速離心機進行超速離心可以獲得高產量的外泌體。但是此方法的缺點是：非外泌體材料對外泌體分離物的污染仍然是基于聚合物的分離方法的一個問題。此外，分離物中的聚合物可能會干擾下游分析。外泌體的純化可以通過單顆粒色譜等技術實現。外泌體報價

外泌體是指包含了復雜RNA和蛋白質的小膜泡(30-150nm)，現今，其特指直徑在40-100nm的盤狀囊泡。1983年，外泌體頭次于綿羊網織紅細胞中被發現，1987年Johnstone將其命名為“exosome”。多種細胞在正常及病理狀態下均可分泌外泌體。其主要來源于細胞內溶酶體微粒內陷形成的多囊泡體，經多囊泡體外膜與細胞膜融合后釋放到胞外基質中。所有培養的細胞類型均可分泌外泌體，且外泌體天然存在于體液中，包括血液、唾液、尿液、腦脊液和乳汁中。有關他們分泌和攝取及其組成、“運載物”和相應功能的精確分子機制剛剛開始研究。外泌體被視為特異性分泌的膜泡，參與細胞間通訊，對外泌體的研究興趣日益增長，無論是研究其功能還是了解如何將其用于微創診斷的開發。尿液外泌體分離芯片檢測外泌體與神經系統的關系復雜，通過在神經元間的轉移，參與多種神經疾病的發生和病理機制的形成。

分離外泌體的方法之過濾：過濾方法只取決于分子量或組分的大小，并有助于獲得較佳的外泌體產量。超濾、凝膠過濾和靜水透析包含在外泌體分離的過濾原理下。外泌體可以根據其定義的分子量或體積排阻限，使用標準膜過濾器從其他EV組分和細胞碎片中分離出來。市售的聚偏二乙烯碳酸酯膜過濾器具有各種孔徑范圍，用于滲透、納濾和微濾應用。分離外泌體的方法之體積排阻色譜（SEC）：該方法主要有助于從分離的外泌體中去除蛋白質和脂蛋白雜質，它已被用于從尿液和血漿蛋白中分離外泌體。它被用作超速離心和超濾的后續分離方法。瓊脂糖2B/CL4B、qEV和瓊脂丙烯酸S-400是通常用于凝膠過濾色譜分離外泌體的色譜柱。SEC可以在低壓下進行，這有助于分離具有完整完整性的外泌體。

分離外泌體的方法之超速離心：離心是一種利用不同的離心力根據顆粒成分的密度、大小和形狀沉淀顆粒成分的過程。超速離心是一種離心過程，較多使用6×106g離心力，有助于隔離更小的組件，例如，核糖體、蛋白質、病毒、外泌體和其他EV。加速度（g）、旋轉半徑、樣品粘度和沉降路徑長度是有效分離外泌體的決定因素。20至250nm之間的粒徑分數可以通過超速離心分離，隨后的離心或尺寸排阻過程產生所需的外泌體。超速離心法被認為是外泌體分離的金標準方法，外泌體需要1×105至2×105g離心1小時。在順序離心過程中，MVs、凋亡小體、細胞碎片、細胞和其他具有較高浮力密度的顆粒在外泌體之前沉淀。然而，必須注意的是，由于密度和大小重疊，大多數當前方法只能富集小EV（即外泌體）。蛋白質分離方法可以用于外泌體的分離和純化。

分離外泌體的方法之降水：它是一種基于生物體液中外泌體的電荷沉淀的方法。帶負電荷的外泌體可以與PEG35,000Da基質中帶正電荷的魚精蛋白相互作用并形成沉淀。外泌體的回收和重懸比基于超速離心的分離更有效。聚合物沉淀法以更少的勞動力和昂貴的設備分離尿外泌體的潛在益處。該方法首先利用DL-二硫蘇糖醇溶液還原或去除Tamm-Horsfall蛋白的聚合網絡，然后在25°C和30min下只用10,000×g的向心力即可實現外泌體的沉淀。還有利用聚合物沉淀方法并消除超速離心的商業試劑盒。ExoQuick?、Exo-spin?是來自Invitrogen?和miRCURY?的市售總外泌體分離試劑。外泌體來源于細胞內各種類型的囊泡，包括內質網、高爾基體和細胞膜等。外泌體報價

外泌體分離的方法會影響外泌體樣品的質量和數量。外泌體報價

外泌體的表征方法之非光學方法：非光學方法主要包括掃描電子顯微鏡（SEM）、透射電子顯微鏡（TEM）、冷凍電子顯微鏡（Cryo-EM）、原子力顯微鏡（AFM）、免疫檢測方法（ELISA）、傅立葉變換紅外光譜（FTIR）、可調諧電阻脈沖傳感(TRPS)和單粒子干涉反射成像傳感器(SP-IRIS)。SEM、TEM和AFM方法通常用于直接膜結構和形態測定，而ELISA檢測提供各種結構顆粒（主要是蛋白質和受體）的檢測和量化，例如，用于外泌體形態的確認。單粒子干涉反射成像傳感器(SP-IRIS)也用于外泌體定量，但也可用于檢測特定標記物和確定外泌體亞群。外泌體報價